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基于細(xì)胞生物電傳感效應(yīng)的復(fù)方丹參片溶出動力學(xué)研究

發(fā)布時間:2022-03-24所屬分類:醫(yī)學(xué)職稱論文瀏覽:1

摘 要: 摘 要:目的 建立復(fù)方丹參片的細(xì)胞生物電傳感效應(yīng)模型,以此進行復(fù)方丹參片的溶出動力學(xué)研究。方法 以實時細(xì)胞電子分析技術(shù)(real-time cell-based assay,RTCA)為手段,測定復(fù)方丹參片的體外溶出度,建立溶出動力學(xué)模型,并與紫外分光光度法進行比較驗證。結(jié)果 CCK-8

  摘 要:目的 建立復(fù)方丹參片的細(xì)胞生物電傳感效應(yīng)模型,以此進行復(fù)方丹參片的溶出動力學(xué)研究。方法 以實時細(xì)胞電子分析技術(shù)(real-time cell-based assay,RTCA)為手段,測定復(fù)方丹參片的體外溶出度,建立溶出動力學(xué)模型,并與紫外分光光度法進行比較驗證。結(jié)果 CCK-8 實驗和 RTCA 實驗聯(lián)合篩選出對復(fù)方丹參片有特定依賴性的細(xì)胞株,建立基于 RTCA 技術(shù)的復(fù)方丹參片溶出動力學(xué)模型,得到最佳擬合模型 Weibull 模型 ln{ln[1/(1-Q)]}=1.071 4 lnt-3.736 7;建立基于紫外分光光度法的復(fù)方丹參片溶出動力學(xué)模型,得到最佳擬合模型 Weibull 模型 ln{ln[1/(1-Q)]}=1.080 4 lnt-3.723 4;兩者的 Weibull 模型比較,RTCA 擬合的模型效果更佳。結(jié)論 RTCA 技術(shù)應(yīng)用于中藥復(fù)方固體制劑溶出動力學(xué)研究,具有可行性,并為中藥及中藥復(fù)方質(zhì)量評價提供了新思路。

基于細(xì)胞生物電傳感效應(yīng)的復(fù)方丹參片溶出動力學(xué)研究

  關(guān)鍵詞:復(fù)方丹參片;體外溶出度;實時細(xì)胞電子分析技術(shù);溶出動力學(xué)模型;CCK-8 實驗;Weibull 模型

  中國傳統(tǒng)醫(yī)藥學(xué)十分重視人體氣、血、津液的正常運行,認(rèn)為血瘀證是由氣虛、氣滯、火熱、寒凝等引起,血停滯不行而血行不暢。祛瘀活血法是治療血瘀證的基本方法,在古代經(jīng)典著作《傷寒論》《金匱要略》等中均有活血化瘀法的記載,活血化瘀通過多種活血化瘀藥物的綜合,具有化瘀行滯的作用,通過平衡氣血、調(diào)節(jié)陰陽與疏通活血等多重作用,幫助患者扶正祛邪,淤血消除,疼痛自然消失[1]。現(xiàn)代臨床研究[2-5]顯示,活血化瘀中藥及其復(fù)方在改善血流動力學(xué)、抑制血栓形成、降低血壓、抑制腫瘤疾病上有顯著的臨床療效。隨著活血化瘀中藥及其復(fù)方作用機制不斷深入研究,證明活血化瘀類中藥對改善臨床血瘀證具有積極意義,展現(xiàn)出良好的應(yīng)用前景。復(fù)方丹參片作為最為常用的活血化瘀類中成藥之一,由丹參、三七、冰片組成,對冠心病、心絞痛以及氣滯血瘀所致的胸痹、胸悶等疾病[6],有確切且顯著的療效,被廣泛應(yīng)用于臨床。復(fù)方丹參片由于其藥效物質(zhì)成分較復(fù)雜,仍有許多療效不明的未知成分[7-10],目前所測的化學(xué)指標(biāo)成分往往與其活血化瘀功效不是直接相關(guān),傳統(tǒng)的以單一化學(xué)指標(biāo)成分為中心的質(zhì)量評價方法已不適用,使其質(zhì)量評價受到限制,亟需能夠體現(xiàn)整體藥效的新型質(zhì)量評價與分析方法的建立。

  本實驗采用了一種新型的電子分析技術(shù)實時細(xì)胞電子分析技術(shù)(RTCA)。RTCA 是一種基于阻抗的瞬態(tài)電池-電感應(yīng)連續(xù)記錄系統(tǒng),通過監(jiān)測細(xì)胞的動態(tài)變化過程(包括細(xì)胞增殖與分化、凋亡與衰老、黏附等多種細(xì)胞生理狀態(tài)),轉(zhuǎn)換成電信號細(xì)胞指數(shù)(cell index,CI),并形成時間劑量依賴性細(xì)胞反應(yīng)曲線(TCRPs),間接反映藥物對細(xì)胞作用(促進或抑制)的強弱,并可據(jù)此評價藥物的生物活性[11]。本實驗將 RTCA 應(yīng)用于復(fù)方丹參片血瘀功能相關(guān)的細(xì)胞生物活性的檢測,嘗試篩選出對藥物反應(yīng)靈敏、穩(wěn)定且有特定濃度依賴性的細(xì)胞株,探索其用于質(zhì)量評價的可能性。

  1 材料

  1.1 實驗動物

  健康成年 SD 大鼠,雄性,體質(zhì)量 200~240 g,購于南京青龍山動物養(yǎng)殖場,動物許可證號 SYXK (蘇)2017-0001。

  1.2 主要試劑與儀器

  CCK-8 溶液(日本同仁化學(xué)研究所);青鏈霉素(Gibco 公司);胎牛血清(FBS,浙江天杭生物科技股份有限公司);磷酸鹽緩沖液(PBS,Gibco 公司)、胰蛋白酶溶液(Gibco 公司);水合氯醛(國藥集團化學(xué)試劑有限公司,分析純);RTCA 板(杭州艾森生物有限公司);DMEM 培養(yǎng)基(Corning 公司);復(fù)方丹參片(廣西藥用植物園制藥廠,批號 171101-049);大鼠心肌細(xì)胞(H9C2 細(xì)胞)、人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(HUVEC 細(xì)胞)購自中國科學(xué)院上海細(xì)胞庫,大鼠胸主動脈平滑肌細(xì)胞(RA-VSMC 細(xì)胞)來自大鼠原代分離。

  RC-3 溶出度測試儀(天津新天光公司); UV-2401 紫外可見分光光度計(日本島津公司); HH-4 數(shù)顯恒溫水浴鍋(常州國華電器有限公司); RTCA 實時無標(biāo)記細(xì)胞分析儀(杭州艾森生物有限公司);Sorvall ST16R 臺式高速冷凍離心機、Sorvall ST16R 臺式低速離心機(美國 Thermo 公司);3111 型 CO2 培養(yǎng)箱(美國 Thermo 公司);渦旋振蕩儀(美國 Bio-Rad 公司);ECLIPSE Ti-S 型倒置顯微鏡(日本 Nikon 公司);1300 SERIES A2 生物安全柜(美國 Thermo 公司)。

  2 方法與結(jié)果

  2.1 CCK-8 法篩選復(fù)方丹參片作用細(xì)胞的合適質(zhì)量濃度

  2.1.1 HUVEC 或 H9C2 細(xì)胞的培養(yǎng) 將復(fù)蘇的 HUVEC 或 H9C2 細(xì)胞置于飽和濕度的細(xì)胞培養(yǎng)箱中,用含 10% FBS 的 DMEM 培養(yǎng)基,在 37 ℃、 5% CO2 條件下培養(yǎng)細(xì)胞至 85%融合度時,用 0.25% 胰蛋白酶消化傳代,倒置顯微鏡中觀察,取對數(shù)生長期的細(xì)胞用于細(xì)胞實驗。

  2.1.2 RA-VSMC 細(xì)胞的制備及培養(yǎng) 取體質(zhì)量約 220 g SD 大鼠,ip 10%水合氯醛溶液(35 mL/kg),待大鼠麻醉后處死,迅速剪開胸腔并剪取大鼠胸主動脈組織,立即放入預(yù)冷的含 PBS 的 DMEM 培養(yǎng)基(含 1×105 U/L 青鏈霉素),并反復(fù)不斷洗滌。用手術(shù)鑷輕輕刮去血管外膜及血管內(nèi)膜,將血管剪成 1 mm3 左右的小塊,分別均勻平鋪于培養(yǎng)皿中,向培養(yǎng)皿中加入含 20% FBS 的培養(yǎng)液 3~5 mL,置于 37 ℃、5% CO2 的飽和濕度細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng),直至傳代,取對數(shù)生長期的細(xì)胞用于細(xì)胞實驗。

  2.1.3 復(fù)方丹參片供試樣品的制備 取復(fù)方丹參片適量,置于研缽內(nèi)搗碎,取 0.32 g,精密稱定,置于 50 mL 量瓶內(nèi),加入適量 pH 6.8 的 PBS 溶液,超聲 30 min 溶解,再加入 pH 6.8 的 PBS 溶液定容至刻度,濾過不溶物質(zhì)(輔料的殘渣),4 ℃儲存?zhèn)溆谩H∩鲜鋈芤合♂尣煌稊?shù)配成 0、1.0、1.25、 1.5、2.0、2.5、3.0、3.5、4.0、6.4 mg/mL 的藥液用于 CCK-8 實驗。

  2.1.4 細(xì)胞種板及給藥 取正常培養(yǎng)的處于對數(shù)生長期的細(xì)胞,1 000 r/min 離心 5 min,計數(shù)板下計數(shù),調(diào)整細(xì)胞密度為 2×104個/mL,鋪 96 孔板,每孔均加入 100 μL 細(xì)胞懸液,貼壁培養(yǎng)過夜后,加入不同質(zhì)量濃度(1.0、1.25、1.5、2.0、2.5、3.0、3.5、4.0、 6.4 mg/mL)的復(fù)方丹參片供試樣品,48 h 后每孔加入 10 μL 的 CCK-8 檢測液,設(shè)置對照孔,37 ℃避光孵育 60 min,在波長 450 nm 測定吸光度(A)值,計算細(xì)胞存活率(細(xì)胞存活率=A 實驗/A 對照)。CCK-8 檢測結(jié)果見圖 1、2,HUVEC 和 H9C2 細(xì)胞在復(fù)方丹參片 1.0~6.4 mg/mL 反應(yīng)靈敏,細(xì)胞存活率由高降到最低,可作為這 2 種細(xì)胞篩選的質(zhì)量濃度范圍,因此選擇 0、0.3、0.6、1.0、1.4、1.8、2.2、2.6 mg/mL 這 8 個質(zhì)量濃度。由圖 2 可知,RA-VSMC 細(xì)胞在復(fù)方丹參片1.0~2.5 mg/mL時細(xì)胞存活率一直處于穩(wěn)定水平,未顯示差異,而在復(fù)方丹參片 4.0~6.4 mg/mL 時,細(xì)胞存活率下降幅度較大。為了更清楚地觀察該細(xì)胞在復(fù)方丹參片不同質(zhì)量濃度下的作用,需要拉大低質(zhì)量濃度的間隔,縮小高質(zhì)量濃度的間隔,因此選擇 0、0.5、1、2、4、4.5、5、6 mg/mL 這 8 個質(zhì)量濃度。

  2.2 RTCA 篩選復(fù)方丹參片的特定依賴性細(xì)胞株

  2.2.1 RTCA 實驗細(xì)胞培養(yǎng) 各細(xì)胞培養(yǎng)方法同 “2.1.1”和“2.1.2”項。

  2.2.2 復(fù)方丹參片 RTCA 實驗樣品的制備 取復(fù)方丹參片適量,置于研缽內(nèi)搗碎,取 0.32 g,精密稱定,置于 50 mL 量瓶內(nèi),加入適量 pH 6.8 的 PBS 溶液,超聲 30 min 溶解,再加入 pH 6.8 的 PBS 溶液定容至刻度,濾過不溶物質(zhì),4 ℃儲存?zhèn)溆谩H∩鲜鋈芤合♂尣煌稊?shù)配成 0.3、0.6、1.0、1.4、1.8、 2.2、2.6 mg/mL 的藥液用于 HUVEC 細(xì)胞和 H9C2 細(xì)胞實驗,另取上述溶液稀釋不同倍數(shù)配成 0.5、 1.0、2.0、4.0、4.5、5.0、6.0 mg/mL 的藥液用于 RA-VSMC 細(xì)胞實驗。

  2.2.3 RTCA測定 依據(jù)復(fù)方丹參片的藥理作用[12-14],本實驗選取 HUVEC、H9C2、RA-VSMC 細(xì)胞,采用 RTCA 技術(shù),測定 CI 值,測定各個樣本的 TCRPs 曲線,通過直觀判斷和統(tǒng)計分析,考察細(xì)胞對藥物效應(yīng)反應(yīng)的靈敏度、穩(wěn)定性及濃度梯度依賴性。首先在細(xì)胞檢測板中每個小孔加入 50 μL 生長介質(zhì),再加入密度為 2×104 個/mL 的特定細(xì)胞懸液 100 μL。將此細(xì)胞檢測板在室溫下放置 30 min 后,放到培養(yǎng)箱中連續(xù)培養(yǎng)。24 h 后,當(dāng)細(xì)胞數(shù)量穩(wěn)定時,取 HUVEC 細(xì)胞和 H9C2 細(xì)胞的細(xì)胞檢測板,除對照組外,向每孔中加入配好的復(fù)方丹參片供試藥液 50 μL,使小孔內(nèi)的藥液終質(zhì)量濃度分別為 0.3、0.6、 1.0、1.4、1.8、2.2、2.6 mg/mL,每個質(zhì)量濃度設(shè) 3 個復(fù)孔。另取 RA-VSMC 細(xì)胞的細(xì)胞檢測板,除對照組外,向每個孔中分別加入終質(zhì)量濃度 0.5、1.0、 2.0、4.0、4.5、5.0、6.0 mg/mL 的復(fù)方丹參片供試樣品 50 μL,每個質(zhì)量濃度設(shè) 3 個復(fù)孔。將加好樣的檢測板放入實時細(xì)胞電子分析儀中,檢測 72 h,測出各藥液作用于細(xì)胞后所產(chǎn)生的 TCRPs 曲線,篩選出對復(fù)方丹參片具有較好濃度依賴性響應(yīng)的細(xì)胞株(即在一定時間內(nèi)不同質(zhì)量濃度藥物的 TCRPs 曲線明顯分開)。結(jié)果見圖 3 和 4。

  由圖 3 可以看出,HUVEC 細(xì)胞對不同質(zhì)量濃度的復(fù)方丹參片反應(yīng)較靈敏,給藥后 CI 值有明顯波動。給藥初期,低質(zhì)量濃度樣品組及對照組促進 CI 值的增加,在一段時間后趨向平穩(wěn)。CI 值在高質(zhì)量濃度樣品組作用下先快速增加,隨即大幅度減少, 2.6 mg/mL 樣品作用強烈,其 40 h 后 CI 值趨近于 0。給藥后期,與對照組相比較,低質(zhì)量濃度樣品組對 CI 值起促進作用,高質(zhì)量濃度樣品組對 CI 值起抑制作用。但是,后期不同質(zhì)量濃度樣品所對應(yīng)的曲線有重疊現(xiàn)象,難以區(qū)分,沒有明顯的質(zhì)量濃度梯度依賴性,無法為后期實驗做準(zhǔn)備。

  H9C2 細(xì)胞對不同質(zhì)量濃度的樣品反應(yīng)也較靈敏。給藥后 CI 值均出現(xiàn)明顯波動。給藥初期,低質(zhì)量濃度樣品組及對照組對 CI 值起促進作用,質(zhì)量濃度越低,促進作用越強,在一段時間后趨向平穩(wěn)。高質(zhì)量濃度樣品組對 CI 值起抑制作用,且質(zhì)量濃度越高,其抑制作用越強。整體來看,不同質(zhì)量濃度所對應(yīng)的曲線呈現(xiàn)較好的分離,H9C2 對樣品也有明顯的質(zhì)量濃度梯度依賴性,可以作為后期實驗的細(xì)胞。從 CI 值變化來看,有效的質(zhì)量濃度范圍應(yīng)是 0.3~1.8 mg/mL。

  圖 4 可見,給藥初期,低質(zhì)量濃度樣品組及對照組對 RA-VSMC 細(xì)胞 CI 值起促進作用,但幅度較小。高質(zhì)量濃度樣品組對細(xì)胞的作用過于強烈,導(dǎo)致 CI 值快速趨于 0,細(xì)胞接近凋亡。并且, RA-VSMC 細(xì)胞沒有明顯的質(zhì)量濃度梯度依賴性。

  綜上,選擇 H9C2 細(xì)胞作為復(fù)方丹參片溶出度評價的細(xì)胞。

  2.3 基于 RTCA 的復(fù)方丹參片溶出度的測定及動力學(xué)模型的建立

  2.3.1 溶液的配制 (1)空白人工胃液的配制:按照《中國藥典》2015 年版四部,取稀鹽酸 16.4 mL,加水約 800 mL 與胃蛋白酶 10 g,搖勻使其充分溶解后,加水稀釋定容至 1 000 mL,即為人工胃液。空白人工胃液的配制:除不含胃蛋白酶外,其余與人工胃液配制相同[15]。(2)空白人工腸液的配制:按照《中國藥典》2015 年版四部,取磷酸二氫鉀 6.8 g,加水 500 mL 使其溶解,用 0.1 mol/L 氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié) pH 值至 6.8;另外稱取 10 g 胰蛋白酶加適量水溶解,將 2 液混合后,加水定容至 1 000 mL,即為人工腸液。空白人工腸液的配制:除不含胰蛋白酶外,其余與人工腸液配制相同[15]。(3)磷酸鹽緩沖液(pH 7.4)的配制:按照《中國藥典》2015 年版四部,取磷酸二氫鉀 1.36 g,加 0.l mol/L 氫氧化鈉溶液 79 mL,用水稀釋至 200 mL,即得。

  2.3.2 復(fù)方丹參片溶出度供試樣品的制備 (1)不同溶出時間樣品:

  取空白人工胃液 1 000 mL 置溶出杯中,加熱至 37 ℃,調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)籃轉(zhuǎn)速為 100 r/min,將精密稱定質(zhì)量的復(fù)方丹參片分別放入轉(zhuǎn)籃內(nèi),以空白人工胃液接觸藥片時為零時刻開始計時,然后按 10、20、30、40、50、60、70 min 定時取樣,每次取樣 10 mL(立即補充同溫同體積的空白人工胃液),用 pH 7.4 磷酸鹽緩沖液調(diào)節(jié)至 pH 6.8(模擬腸液環(huán)境),取 10 mL 于蒸發(fā)皿水浴蒸干,用 3 mL 細(xì)胞培養(yǎng)液溶解,微孔濾膜濾過,取續(xù)濾液即得。(2)完全溶出樣品:另取復(fù)方丹參片 10 片,精密稱定,計算出平均片質(zhì)量(W),將稱定的片劑研細(xì),再精密稱取相當(dāng)于 W 的量,置 1 000 mL 量瓶中,加入空白人工胃液至刻度,混勻,置于(37.0±0.5)℃ 水浴中 2 h 以上,每隔 15 min 振搖 1 次。冷至室溫,取 10 mL,用 pH 7.4 的磷酸鹽緩沖液調(diào)節(jié)至 pH 6.8,精確測量體積,于蒸發(fā)皿水浴蒸干,用 3 mL 細(xì)胞培養(yǎng)液溶解,微孔濾膜濾過,取續(xù)濾液即得。

  2.3.3 CI 測定 將 H9C2 細(xì)胞置于含 10% FBS 的 DMEM 培養(yǎng)基中、在 37 ℃下、5% CO2、飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。取對數(shù)生長期的細(xì)胞,800 r/min 離心 5 min,計數(shù)板下計數(shù),調(diào)整細(xì)胞濃度至 2×104 個/mL,RTCA 板每孔中加入 100 μL 細(xì)胞懸液,貼壁培養(yǎng)過夜,24 h 后,換液,按照要求加入“2.3.2” 項下的復(fù)方丹參片溶出度供試樣品溶液 200 μL,繼續(xù)檢測 72 h,得到樣品溶液作用于 H9C2 細(xì)胞后所產(chǎn)生的 TCRPs 曲線,結(jié)果見圖 5。

  由圖 5 可知,溶出時間短的樣品對 CI 呈促進趨勢,溶出時間長的樣品對 CI 呈抑制趨勢。加藥前 CI 上升,加藥后 1~2 h 內(nèi) CI 下降較快,2 h 后溶出時間短的樣品組 CI 呈穩(wěn)定上升趨勢,溶出時間長的樣品 CI 持續(xù)下降,說明細(xì)胞在給藥 1~2 h 內(nèi)受藥物影響最大,且呈現(xiàn)一定的質(zhì)量濃度梯度依賴性,故選擇圖 5 所示 24.10~25.85 h 的數(shù)據(jù)(表 1)進行累積溶出率(Q)計算,并繪制溶出曲線(圖 6)。 Q=(CIi-CIck)/(CI0-CIck) CIi 指各時間點溶出樣品的 CI 值,CIck 指不加藥物時的 CI 值,CI0指藥物完全溶出時的 CI 值

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  2.3.4 復(fù)方丹參片的 CI 溶出動力學(xué)模型擬合 為更好地考察復(fù)方丹參片的溶出情況,將利用一定的已知數(shù)學(xué)模型對該溶出過程進行擬合,這也是釋藥機制研究的常用方法。目前的模型主要有零級模型、一級模型、Weibull 模型、Higuchi 模型、Ritger-Peppas 模型等。其中零級模型考察是否恒速釋藥,一級模型考察是否非恒速釋藥。Weibull 模型應(yīng)用廣泛,幾乎適用于所有溶出曲線。Higuchi 模型主要用于研究緩釋制劑等,Ritger-Peppas 模型主要用于研究圓球型制劑的釋放機制。考慮到本實驗中復(fù)方丹參片的制劑特點,選用零級模型、一級模型及 Weibull 模型進行擬合。結(jié)果見表 2。可知,復(fù)方丹參片的累積溶出率與時間有很好的相關(guān)性,且與上述模型具有較好的擬合度,其中最佳擬合模型為 Weibull 模型。

  2.4 紫外分光光度法測定復(fù)方丹參片的溶出度及擬合模型的建立

  2.4.1 線性關(guān)系考察 量取“2.3.2”項下復(fù)方丹參片完全溶出溶液適量,用 pH 7.4 的磷酸鹽緩沖液調(diào)節(jié)至 pH 6.8,濾過,將此時的濾液作為 100%溶出量,并用 pH 6.8 的空白人工腸液稀釋成相對溶出量為 90%、70%、50%、30%、20%、10%的濃度系列,以 pH 6.8 的人工腸液為空白,測定在 283 nm 條件下的 A 值。以相對溶出量為橫坐標(biāo)(X),A 值為縱坐標(biāo)(Y),計算回歸方程[16],回歸方程為 Y=0.021 8 X-0.002 7,r=0.999 4。

  2.4.2 穩(wěn)定性試驗 吸取適量相對溶出量為50%的溶液,分別在 0、1、2、4、6、12 h 測定 A 值,結(jié)果分別為 0.064、0.065、0.065、0.066、0.064、0.065, RSD 為 1.16%,RSD<3.0%,表明藥液穩(wěn)定性較好。

  2.4.3 精密度試驗 吸取適量復(fù)方丹參片完全溶出的藥液,重復(fù) 6 次測定 A 值,測得 A 值分別為 0.127、 0.128、0.128、0.127、0.128、0.128,RSD 為 0.4%, RSD<3.0%,表明該儀器精密度良好。

  2.4.4 樣品溶出度測定 取復(fù)方丹參片 10 片,精密稱定,計算出平均片質(zhì)量(W),將稱定的片劑研細(xì),再精密稱取相當(dāng)于 W 的量,置 1 000 mL 量瓶中,加入空白人工胃液至刻度,混勻,置于(37.0±0.5)℃ 水浴中 2 h 以上,每隔 15 min 振搖 1 次。冷至室溫,取 10 mL,用 pH 7.4 磷酸鹽緩沖液調(diào)節(jié)至 pH 6.8,取樣,微孔濾膜濾過,取續(xù)濾液用紫外可見分光光度計于 283 nm 處測定 A 值(A 總)。取空白人工胃液 1 000 mL 置溶出杯中,加熱至 37 ℃,調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)籃轉(zhuǎn)速為 100 r/min,將精密稱定質(zhì)量的復(fù)方丹參片 1 片(W1)放入轉(zhuǎn)籃內(nèi),以空白人工胃液接觸藥片時為零時刻開始計時,然后按 10、 20、30、40、50、60、70、80 min 定時取樣 10 mL (立即補充同溫同體積的空白人工胃液),用 pH 7.4 磷酸鹽緩沖液調(diào)節(jié)至 pH 6.8,取樣,微孔濾膜濾過,取續(xù)濾液用紫外可見分光光度計于 283 nm 處測定 A 值(Ai)。按公式計算 Q。繪制溶出度曲線(圖 7)。 Q=WAi/W1A 總

  2.4.5 復(fù)方丹參片的紫外分光光度法溶出動力學(xué)模型擬合 以零級模型、一級模型、Weibull 模型對溶出過程進行擬合,結(jié)果見表 3。復(fù)方丹參片的累積溶出率與時間有較好的相關(guān)性,與 3 種模型有較好的擬合度,其中與 Weibull 模型的擬合度最佳。——論文作者:馬曉斐 1 ,王建春 2 ,潘金火 1, 2,謝 輝 1 ,陳 軍 1 ,張 倩 1 ,韓星星 1 ,嚴(yán)國俊 1*

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