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摘 要： 摘要:骨髓間充質(zhì)干細胞在體內(nèi)所處的力學環(huán)境比較復雜，為了探索生物力學與骨髓間充質(zhì)干細胞增殖分化之間的關系，對近年來生物力學微環(huán)境對骨髓間充質(zhì)干細胞增殖分化影響的研究現(xiàn)狀和最新進展進行了綜述。認為牽張力與流體剪切力對骨髓間充質(zhì)干細胞產(chǎn)生的刺激
摘要:骨髓間充質(zhì)干細胞在體內(nèi)所處的力學環(huán)境比較復雜，為了探索生物力學與骨髓間充質(zhì)干細胞增殖分化之間的關系，對近年來生物力學微環(huán)境對骨髓間充質(zhì)干細胞增殖分化影響的研究現(xiàn)狀和最新進展進行了綜述。認為牽張力與流體剪切力對骨髓間充質(zhì)干細胞產(chǎn)生的刺激大部分會使其向成骨方向分化，而較大的壓縮力和靜水壓力對骨髓間充質(zhì)干細胞產(chǎn)生的刺激大部分會使其偏向軟骨方向分化，小部分向成骨方向分化，每種分化方向都有其最適的分化條件。通過綜述生物力學對骨髓間充質(zhì)干細胞增殖及成骨分化的影響，為骨髓間充質(zhì)干細胞的骨組織工程與再生醫(yī)學研究及更好地應用于臨床治療提供思路和參考依據(jù)。
關鍵詞:骨髓間充質(zhì)干細胞;生物力學;增殖;分化
骨髓間充質(zhì)干細胞(bonelessmarrowmesenchymalstemcells，BMSCs)是一類具有自我增殖、多向分化潛能的干細胞，具備免疫源性低、方便取材、來源廣泛等優(yōu)點，常用于細胞組織移植、心血管疾病、骨缺損修復等多個領域[1-2]。研究認為BMSCs在生長過程中可感知不同的生物力學信號，從而影響細胞增殖、成骨分化等功能，而體內(nèi)BMSCs的生長、成骨分化與骨組織的再生等也離不開復雜的力學作用環(huán)境[3-4]。目前已有相關力學對BMSCs影響的研究[5-6]，但采用的力學加載模式、時間、頻率等皆不盡相同，且不同的作用力對BMSCs增殖、分化的影響不同。本文闡述了不同生物力學(牽張力、壓力、流體剪切力)對BMSCs增殖與成骨分化的影響，及其可能作用的基因和信號傳導通路等，為BMSCs的骨組織工程與再生醫(yī)學研究及更好地應用于臨床治療提供參考。
1不同牽張力作用對BMSC增殖和成骨分化的影響
牽張力(mechanicaltensionstress，MTS)作為一個重要機械調(diào)節(jié)因素，對BMSCs起到拉伸應力作用[7]。目前國內(nèi)外已有多種不同力學加載設備及力學刺激方式，其中研究較多的為牽張力。研究證實牽張力可有效促進細胞活性和功能，在骨再生和骨生物工程的臨床應用中有重要指導意義[8]。但不同牽張力對BMSCs的增殖及成骨分化有不同的影響。
細胞的受力大小是無法測量出來的，只能間接通過硅膠膜的形變率、支撐物的上下運動位移來估計(根據(jù)牽拉頭尺寸參數(shù)表計算，文中力的強度用百分數(shù)來表示)。黎潤光等[9]參考Schaffer建模方法自行建立體外細胞周期性機械牽張力學裝置，在1.0Hz的頻率下，分別采用不同應力大小、不同時間的機械信號刺激，結(jié)果表明12%應力作用下增殖指數(shù)最高，可達到無應力狀態(tài)下的1.86倍，而采用過強的牽張應力(18%)時，對細胞不具有促進增殖效應;同時，牽張力干預早期可以促進BMSCs增殖，干預時間超過48h反而表現(xiàn)為抑制生長狀態(tài)。井燕等[10]采用雙軸力學應變系統(tǒng)選取0.4%、1.0Hz頻率、每天3次、每次2h、間隔2h的力學應變加載BMSCs，力學應變作用后細胞增殖指數(shù)(proliferationindex，PI)比相應靜態(tài)組增高，動物骨橋蛋白(Osteopontin，OPN)和堿性磷酸酶(Alkalinephosphatase，ALP)的表達均有明顯升高，表明力學應變可以提高BMSCs的增殖和成骨分化能力。戚孟春等[11]采用四點彎曲加力系統(tǒng)施加的40min、0.2%機械牽張力作用于大鼠BMSCs，發(fā)現(xiàn)受力組在受力后細胞數(shù)明顯高于對照組，BMSCs增殖活力顯著增高并短暫性成骨向分化。通過加載機械張力，模擬骨組織受力情況發(fā)現(xiàn)，不同大小、時間、頻率的機械張力均影響B(tài)MSCs增殖，大小適宜的機械張力可起到促進作用。
高鶯等[12]同樣采用四點彎曲加力系統(tǒng)對SD大鼠BMSCs施加0.2%機械牽張力，結(jié)果顯示其細胞生長曲線與對照組相比差別不大，但骨鈣素表達水平和ALP活性顯著增高，且芯片雜交檢測的差異表達基因數(shù)量變化明顯。薛令法等[13]采用Flexcell體外細胞力學加載裝置，施加0.5Hz頻率、0.8%形變率、每天2次、每次30min的間歇性牽張力，可促進小鼠BMSCs成骨分化。Wu等[14]通過Flexercell-5000給予人BMSCs機械拉伸(10%，0.5Hz)，數(shù)據(jù)顯示LncRNAH19通過上調(diào)下游FAK來介導牽張力誘導的BMSCs成骨分化。Jang等[15]采用單軸拉伸應力單元系統(tǒng)，分別以3%和10%拉伸力、0.26Hz頻率給予兔源BMSCs循環(huán)張力，結(jié)果發(fā)現(xiàn)張力促進BMSCs增殖增加，并且10%牽張力趨向平滑肌細胞分化，3%牽張力趨向成骨細胞分化。Song等[16]采用自行組裝的機械拉伸裝置以1Hz頻率、2%～8%拉伸15～60min，經(jīng)MTT檢測后顯示牽張力具有促進BMSCs增殖的重要作用，且采用8%應變、60min拉伸處理的BMSCs細胞c-fos基因表達明顯升高。通過以上研究發(fā)現(xiàn)，一定條件的周期性力學信號刺激可以促進BMSCs向成骨方向分化，但當拉伸幅度及作用時間不同時，可出現(xiàn)不同的細胞分化方向。
2不同壓力作用對BMSCs增殖和成骨分化的影響
力學刺激對細胞功能及組織發(fā)育、重建等有重要影響作用，BMSCs受到多種應力作用，而壓應力同樣作為正常人體關節(jié)運動中的主要受力因素，亦可引起細胞生物力學特性的變化[17]，在研究中對BMSCs施以壓應力(hydrostaticstress，HDS)能很好地模擬細胞的體內(nèi)環(huán)境，同時又易于標準化和結(jié)果間的相互比較與分析[18]。
劉巖正等[19]采用自行設計的可控細胞液壓加載裝置給予BMSCs細胞相應的靜壓力刺激，結(jié)果表明采用90kPa靜壓力每天1h連續(xù)作用2d促BMSCs增殖與成軟骨向分化的作用最顯著，PCNA、SOX-9、AggrecanmRNA的表達均顯著升高。何川等[20]采用自制加壓裝置給予BMSCs加載靜水壓，發(fā)現(xiàn)40kPa的靜水壓連續(xù)作用4d可以促進Cbfa1、OCmRNA表達，連續(xù)作用7d時仍對BMSCs表現(xiàn)為促成骨分化作用，在連續(xù)作用14d時，作用轉(zhuǎn)變?yōu)榇俪芍只＠钫碌萚21]采用自行改制的細胞壓力加載裝置進行力學干預BMSCs，結(jié)果顯示分別在5.32、10.64、21.28kPa壓力干預下細胞增殖指數(shù)均明顯升高，MMP-2活性最低;而在29.26kPa壓力下增殖指數(shù)則明顯下降且死亡增多，基質(zhì)金屬蛋白酶2(Matrixmetalloproteinase-2，MMP-2)活性增高。潘景光等[22]采用自行設計制作的細胞液壓加載裝置對BMSCs經(jīng)動態(tài)壓力處理后，在0～45kPa和0～90kPa動態(tài)正壓作用下，BMSCs增殖活性顯著增強，且與壓力值呈正相關。但通過透射電鏡觀察細胞的超微結(jié)構(gòu)發(fā)現(xiàn)0～45kPa動態(tài)壓力作用下可促進細胞蛋白合成，而在0～90kPa動態(tài)壓力作用下，細胞中出現(xiàn)了凋亡小體，證實在該壓力作用下可誘導細胞凋亡。趙永亮等[23]采用Flexcell-5000基底壓縮加載系統(tǒng)對BMSCs延遲性周期性壓縮應力刺激(正弦波、0.5Hz、20kPa、2h/d壓縮應力)，結(jié)果顯示應力可促進Col2的表達，抑制ROCK通路，并可能通過ROCK通路調(diào)控BMSCs成軟骨分化。易飛舟等[24]采用自主研發(fā)的細胞液壓加載裝置，分別對BMSCs加載持續(xù)靜壓力45、90kPa及周期性動壓力0～45kPa、0～90kPa。數(shù)據(jù)顯示90kPa靜壓作用下Sox9及Aggrecan基因的表達量顯著高于0～90kPa，而0～45kPa壓力促Sox9及Col2基因上調(diào)的作用則高于45kPa壓力，且在持續(xù)90kPa的壓力作用下BMCSs成軟骨分化效果顯著。當對BMSCs加載壓力較小時，壓應力可促進BMSCs增殖且向成骨方向分化，而當壓力增大時BMSCs趨向成軟骨方向分化。
3不同的剪切力作用對BMSCs增殖和成骨分化的影響
骨骼組織中的細胞在生理狀態(tài)下，需要一定強度的流體剪切應力(fluidshearstress，F(xiàn)SS)的刺激，使其保持正常的生理功能，同時，培養(yǎng)液的流動也可對所培養(yǎng)的細胞產(chǎn)生流體剪切應力[25]，有研究表明，一定范圍的流體剪切應力可以刺激BMSCs細胞的分化及增殖，保持細胞正常的生理功能[26-27]。
李洪鵬等[28]采用自制平行平板流動腔對BMSCs加載0.3Pa的流體剪切力刺激30min，結(jié)果表明流體剪切力可提高BMSCs細胞早期的細胞內(nèi)ALP含量，細胞開始向成骨細胞分化，但未能促使晚期的骨鈣素表達升高，說明此強度的流體剪切力不能成功促進人BMSCs最終實現(xiàn)向成骨方向分化。李立等[29]將BMSCs置于平行板流動腔內(nèi)，以0.8Pa切應力條件下誘導24h，發(fā)現(xiàn)BMSCs可轉(zhuǎn)化成內(nèi)皮細胞。Kreke等[30]以0.16Pa的流體剪切力作用于大鼠BMSCs細胞，在成骨誘導培養(yǎng)液(地塞米松、β-甘油磷酸和抗壞血酸)中培養(yǎng)，在第6、8、10和12d檢測時，流體剪切力促進了骨唾液酸蛋白(Bonesialoprotein，BSP)和骨橋蛋白(Osteopontin，OPN)的表達，促進了OPN蛋白的積累，抑制了脂蛋白脂肪酶(Lipoproteinlipase，LPL)的表達;在第20d檢測30min的加載力下，OPN及BSPmRNA的表達水平達到最高，同時，持續(xù)120min時成脂標志物脂蛋白脂肪酶的表達最少。劉立躍等[31]發(fā)現(xiàn)以0.42Pa間歇性FSS培養(yǎng)的BMSCs則向成骨細胞分化明顯，而0.42Pa持續(xù)性FSS和0.034Pa的FSS對BMSCs沒有明顯的誘導分化作用。Stavenschi等[32]將BMSCs在封閉環(huán)境中分別給予不同剪切力，發(fā)現(xiàn)剪切力可以促進成骨標志物Cox2、Runx2和OPN的mRNA表達上調(diào)，確定在BMSCs施加2Hz、2Pa、FSS時成骨標志物表達上調(diào)最明顯。Huang等[33]發(fā)現(xiàn)適當?shù)腇SS單獨處理可以使心肌細胞相關標記物的表達顯著增加，誘導BMSCs向心肌細胞轉(zhuǎn)化。由此可見，BMSCs的增殖和分化與流體剪切力的刺激有密不可分的聯(lián)系，較低強度的流體剪切力對BMSCs的影響并不大，較高強度的流體剪切力會抑制細胞的成骨分化。
不同生物力學作用大小、頻率、作用時間等對BMSCs增殖和成骨分化的影響，以及相關的作用基因，如表1所示。牽張力一般在24h內(nèi)，拉伸幅度為12%以下時，主要通過影響ALP、OPN、COLI、Ets1、Cbfa1、osterix、Runx2等基因，促進BMSCs增殖和成骨分化;壓力范圍在0～90kPa，每日加壓時間在1～6h時，主要通過影響Cbfa1、OC促進BMSCs成骨分化;施加剪切力在0.3～2.0Pa，加載范圍在0.5～2.0h時，主要通過ALP、OC、Runx2、OCN、COLIα等基因，促進BMSCs成骨分化。
4生物力學作用影響B(tài)MSCs增殖和成骨分化參與調(diào)節(jié)的信號傳導通路
細胞感受力學信號，通過信號傳導通路，影響基因的表達和蛋白質(zhì)的合成[34]，機械刺激通過影響整合素表達，繼而整合素將機械刺激轉(zhuǎn)換為生物力學信號，實現(xiàn)對BMSCs的成骨分化調(diào)控。不同力學刺激BMSCs后，BMSCs的整合素α2β1、α5β1、αVβ3等表達量升高，同時以整合素為基礎的FAK參與啟動多條信號通路，通過調(diào)控不同的信號通路，進而促進與成骨分化相關基因表達。由此，多種細胞成分在信號傳導中起到重要的作用，如細胞骨架、整合素、離子通道等方面參與機械力學信號轉(zhuǎn)導[35]。
Simmons等[36]對人BMSCs施加0.25Hz、3%形變率的牽張力，激活了細胞外信號調(diào)節(jié)激酶(ERK1/2)和P38絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)通路，同時發(fā)現(xiàn)p38信號通路在BMSCs應變誘導成骨分化的調(diào)控中起抑制作用。劉小雅等[37]采用Flexcell細胞力學加載裝置對小鼠BMSCs施加0.5Hz、0.8%振幅的機械牽張力，結(jié)果表明在持續(xù)牽張力作用下可通過p38MAPK通路向成骨細胞分化。由此可見，小幅度的牽張力能通過p38MAPK信號通路促進BMSCs成骨分化。趙闖等[38]通過自行研制的細胞加載裝置對BMSCs施加機械張應力0.25%、加力60min，提示牽張力加載激活了Wnt信號3個關鍵分子Wnt3A、β-catenin與Lef-1，并刺激BMSCs增殖與骨向分化過程。另有研究者用Flexcell應變裝置對大鼠BMSCs給予機械張應力10%、0.5Hz頻率，每日2次循環(huán)拉伸刺激，通過短干擾RNA下調(diào)Cbfa1基因表達后，成骨標記物表達出現(xiàn)下降，證明了牽張力刺激可能通過ERK1/2激活的Cbfa1信號通路促進大鼠BMSCs成骨分化[39]。同時，研究表明整合素FAK信號通路參與了機械牽張誘導BMSCs成骨分化的調(diào)節(jié)，整合素介導的FAK活化后，Ras-Raf-MAPK/ERK、FAK-PI3K-Akt等信號通路可能進一步激活，調(diào)控細胞功能[40]。
杜靜等[41]采用自主研發(fā)的靜態(tài)液壓加載裝置對兔BMSCs加載120kPa、每天1h、連續(xù)4d的力學刺激，結(jié)果顯示壓力刺激后，BMP2及Smad1/Smad5表達明顯上調(diào)，同時促進BMSCs軟骨方向的分化。陳驥等[42]采用自行設計制作的可控細胞液壓加載裝置給予90kPa壓強加載1h，提示壓力可以通過激活RhoA的活性可促進DNA合成及細胞增殖，并在成骨誘導早期，依賴RhoA活性，壓力可促進BMSCs成骨分化，而在成骨誘導晚期，RhoA活性抑制，OPN下調(diào)，壓力對成骨分化晚期起抑制作用。另有研究者采用可控細胞液壓加載裝置對大鼠BMSCs施加90kPa流體靜壓力，結(jié)果顯示BMSCs中Sox9、Aggrecan及ColII的mRNA表達量增加，且Rac1在流體靜壓力導致的細胞成軟骨分化過程中亦具有調(diào)控作用[43]。此外，靜水壓力還可通過Wnt-RhoA-ROCK調(diào)節(jié)BMSCs，進而影響早期成骨分化標志物基因的表達[44]。
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研究者使用平行板培養(yǎng)箱研究剪切應力對人BMSCs成骨分化的調(diào)節(jié)能力，結(jié)果顯示在1.2Pa的流體剪切應力作用下，在一段時間內(nèi)對Cbfa1/Runx2基因的表達有影響，而BMSCs的成骨活性迅速增強，I型膠原基因的表達下降，這些效應依賴于p38和ERK1/2的激活[45]。同時，Liu等[46]證實通過信號通路，間歇性流體剪切力可以誘導人BMSCs成骨分化。首先β1整合素感知細胞外間歇性FSS的刺激后，通過激活FAK活化ERK1/2導致Runx2磷酸化，磷酸化的Runx2啟動成骨基因的轉(zhuǎn)錄，進而促進BMSCs向成骨細胞分化;其次，間歇性FSS激活的ERK1/2通過激活NF-κB增加BMPs的表達，BMPs的增加導致BMP/Smad通路的激活，最終導致Runx2的表達;再次，間歇性FSS激活的ERK1/2通過介導NF-κB的活化影響β1整合素的表達。——論文作者：曹盛楠1，2a，2b，師彬2a，2b，孫國棟3，4，王從安2a，2b，王丹丹2a，2b*
